在實驗過程中,我們常常需要證明實驗組相對于對照組某些
蛋白質(zhì)是多了還是少了,那么我們就需要先把細(xì)胞或組織中的蛋白質(zhì)提取出來進(jìn)行測量,今天就給大家介紹一下細(xì)胞與組織蛋白質(zhì)提取的基本知識和步驟。
蛋白樣品制備的原則:
1.盡可能采用簡單方法,以避免蛋白丟失;
2.細(xì)胞和組織樣品的制備應(yīng)盡可能減少蛋白質(zhì)的降解,低溫和蛋白酶抑制劑可防止蛋白質(zhì)的降解;
3.樣品裂解液應(yīng)新鮮制備,并分裝存于-80℃,勿反復(fù)凍融已制備好的樣品;
4.通過超速離心清除其余雜質(zhì)。
一般的理解方法分為溫和的裂解方法和劇烈的蛋白裂解方法。
溫和的裂解方法
用于組成比較簡單的樣品,或分析某一特定的細(xì)胞器。
(1)滲透裂解:血細(xì)胞、組織培養(yǎng)細(xì)胞
(2)凍融裂解:細(xì)菌、組織培養(yǎng)細(xì)胞;液氮凍融
(3)去污劑裂解:用去污劑溶解細(xì)胞膜、裂解細(xì)胞,釋放內(nèi)容物;用于組織細(xì)胞
(4)酶裂解細(xì)胞:植物、細(xì)菌和真菌等含有細(xì)胞壁的細(xì)胞
劇烈的蛋白裂解方法
常用于難于破碎的細(xì)胞,如固體組織內(nèi)的細(xì)胞,或具有堅硬細(xì)胞壁的細(xì)胞,如酵母細(xì)胞。
(1)超聲波裂解法:細(xì)胞樣品
(2)弗氏壓碎器:高壓下迫使細(xì)胞穿過小孔徑而產(chǎn)生剪切力,從而裂解細(xì)胞;常用于含有細(xì)胞壁的微生物、藻類
(3)研磨法:常用于固體組織、微生物;凍存于液氮中,隨后研磨成粉末
(4)機械勻漿法:
(5)玻璃珠勻漿法:利用劇烈振蕩的玻璃珠打破細(xì)胞壁;用于細(xì)胞懸液或微生物
那么蛋白提取的步驟來了:
所需器材:低溫高速
離心機,勻漿攪拌器,超聲儀,真空泵,細(xì)胞掛勺等。
所需試劑:RIPA裂解液,蛋白酶抑制劑(PMSF),無菌PBS等。
蛋白樣品提取
1、細(xì)胞蛋白的提。
1.根據(jù)實驗需要取出需要提取的
細(xì)胞培養(yǎng)板,置于冰上,用吸引器吸除上清液。PS:所有操作均應(yīng)在在冰上進(jìn)行。
2.每孔細(xì)胞(六孔板)中加入 1-2ml 4℃預(yù)冷的PBS
溶液。平放輕輕搖動十秒鐘清洗細(xì)胞,然后吸除洗液,共清洗洗細(xì)胞三次(目的是去除剩余的上清液),*后一次不吸除上清液。
3. 用刮勺將細(xì)胞輕輕刮下,接著用移液器將細(xì)胞和上清液轉(zhuǎn)移至1.5ml離心管中,置入4度離心機(提前開離心機預(yù)冷),離心1.5min,棄去上清液。
4.配置裂解液(所用裂解液為RIPA裂解液,可以使蛋白得到充分釋放),每 1ml 裂解液加 10 μl PMSF(100mM),搖勻置于冰上。(PMSF 要搖勻至無結(jié)晶時才可與裂解液混合)。PS:PMSF屬于蛋白酶抑制劑,可以減少蛋白質(zhì)的講解,另外的蛋白酶抑制劑還可以用cocktail,NaF,NaN3等,也可以同時加入多種蛋白酶抑制劑。
5.將配置好的裂解液加入第3步獲得的細(xì)胞沉淀中,一般5*10^6個細(xì)胞加入100ul的裂解液,然后吹打重懸,使細(xì)胞充分裂解。
6.用超聲儀進(jìn)一步裂解細(xì)胞:將細(xì)胞放置于冰上進(jìn)行超聲,一般功率選擇為15%左右,裂解時間為1分鐘(超聲2s,休息4s),當(dāng)超聲一次后,離心管仍比較渾濁,可以間隔幾分鐘再次超聲。
7.超聲結(jié)束后,將細(xì)胞于4度離心機,12000rpm離心 25min。
8.將離心后的上清分裝轉(zhuǎn)移至1.5ml 離心管,保存于-80℃?zhèn)溆谩?br />
2、組織中總蛋白的提。
1.將少量組織塊置于 1.5ml離心管中,加入500ul含PMSF的強RIPA裂解液,先用干凈的剪刀將組織塊盡量剪碎,當(dāng)組織較軟時(如腦組織),接著用1ml槍頭不斷地吹打吸取,然后用勻漿器進(jìn)一步打碎組織,*后用超聲儀進(jìn)行超聲裂解;當(dāng)組織較韌時(如肌肉組織),可以直接用勻漿器打碎組織,*后用超聲儀進(jìn)行超聲裂解。(裂解組織就是通過不同的方法讓組織塊不斷變。
2.同上方法,將離心管置入 4度離心機,12000rpm離心25min,取上清分裝于1.5ml離心管中并置于-80℃保存。