技術文獻
一般來說，細胞進行轉移和保存，*佳的策略是進行低溫保存（-70℃~-196℃），而細胞深低溫保存的基本原理是：在-70℃以下時，細胞內的酶活性均已停止，即代謝處于完全停止狀態(tài)，故而可以長期保存。細胞低溫保存的關鍵，在于通過0~20℃階段的處理過程，在此溫度范圍內，冰晶呈針狀，極易招致細胞的嚴重損傷。
經過前人的長期試驗，發(fā)現(xiàn)細胞的凍存及復蘇基本原則是 慢凍速融，這樣可以限度的保存細胞活力。 目前細胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性，加上緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細胞損傷。
復蘇細胞應采用 快速融化的方法，這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。
No.1 材料準備
1. 儀器：凈化工作臺、 離心機、恒溫水浴箱、冰箱（4℃、-20℃、-70℃）、倒置相差顯微鏡、培養(yǎng)箱、液氮冰箱。
2. 玻璃器皿：吸管（彎頭、直頭）、 培養(yǎng)瓶、玻璃瓶（250ml、100ml）、廢液缸。
3. 塑料器皿： 吸頭、槍頭、膠塞、移液管（10ml）、15ml離心管、凍存管（1～2ml）。
4. 其他物品：微量加樣槍、紅血球計數(shù)板、記號筆、醫(yī)用橡皮膏、移液槍。
5. 試劑：D-Hanks液、胎牛血清、培養(yǎng)液、雙抗（青霉素、鏈霉素）、胰蛋白酶（0.08%）、1NHCl、7.4%NaHCO3、DMSO（分析純）或無色新鮮甘油。
No.2 細胞凍存
1、10%的DMSO+90%胎牛血清。甘油一般用于菌種保存很少用于細胞凍存。
2、取對數(shù)生長期的細胞，用胰蛋白酶把單層生長的細胞消化下來，懸浮生長的細胞則直接將細胞移至15ml離心管中。
3、離心1000 rpm,5 min。
4、去除胰蛋白酶及舊的培養(yǎng)液，加入適量配制好的凍存培養(yǎng)液，用吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數(shù)，調節(jié)凍存液中細胞的*終密度為5x10^6/ml~1x10^7/ml。
5、 在凍存管上標明細胞的名稱，凍存時間及操作者。
6、凍存：標準的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/min；當溫度達到-25℃以下時，可增至-5℃~-10℃/min；到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中過夜，取出凍存管，移入液氮容器內。
No.3 細胞復蘇
1. 從液氮容器中取出凍存管，直接浸入37℃溫水中，并不時搖動令其盡快融化。
2. 從37℃水浴中取出凍存管，打開蓋子，用吸管吸出細胞懸液，加到離心管并滴加10倍以上培養(yǎng)液，混勻。
3. 離心， 1000 rpm，5 min。
4. 棄去上清液，加入含10%小牛血清培養(yǎng)液重懸細胞，計數(shù)，調整細胞密度，接種培養(yǎng)瓶，37℃培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng)。
5. 次日更換一次培養(yǎng)液，繼續(xù)培養(yǎng)。
凍存和復蘇的原則：慢凍快融
當細胞冷到零度以下，可以產生以下變化：細胞器脫水，細胞中可溶性物質濃度升高，并在細胞內形成冰晶。
如果緩慢冷凍，可使細胞逐步脫水，細胞內不致產生大的冰晶；相反，結晶就大，大結晶會造成細胞膜、綱胞器的損傷和破裂。復蘇過程應快融，目的是防止小冰晶形成大冰晶，即冰晶的重結晶。
慢凍程序
1. 標準程序：采用細胞凍存器
當溫度在-25 ℃以上時， 1~2 ℃/min；
當溫度達-25 ℃以下時， 5~10 ℃/min；
當溫度達-100℃時，可迅速放入液氮中。
2. 簡易程序：將冷凍管（管口要朝上）放入紗布袋內，紗布袋系以線繩，通過線繩將紗布袋固定于液氮罐罐口，按每分鐘溫度下降1~2 ℃的速度，在40 min內降至液氮表面過夜，次晨投人液氮中。
3. 傳統(tǒng)程序：冷凍管置于4℃ 10 分鐘→ -20℃ 30 分鐘→ -80℃ 16~18 小時（或隔夜） → 液氮槽長期儲存。
No.4 細胞計數(shù)及存活測試
1、原理：
(1)計算細胞數(shù)目可用血球計數(shù)盤或是Coultercounter粒子計數(shù)器自動計數(shù)。
(2)血球計數(shù)盤一般有二個chambers，每個chamber中細刻9個1mm2大正方形，其中4個角落之正方形再細刻16個小格，深度均為0.1mm。當chamber上方蓋上蓋玻片后，每個大正方形之體積為1mm2×0.1mm=1.0x10 -4ml。使用時，計數(shù)每個大正方形內之細胞數(shù)目，乘以稀釋倍數(shù)，再乘以104，即為每ml中之細胞數(shù)目。
(3)存活測試之步驟為dyeexclusion，利用染料會滲入死細胞中而呈色，而活細胞因細胞膜完整，染料無法滲入而不會呈色。一般使用藍色之trypan blue染料，如果細胞不易吸收trypan blue，則用紅色之Erythrosin bluish。計算細胞活率：活細胞數(shù)/(活細胞數(shù)+死細胞數(shù))×100%。計數(shù)應在臺盼蘭染色后數(shù)分鐘內完成，隨時間延長，部分活細胞也開始攝取染料;因為臺盼蘭對蛋白質有很強的親和力，用不含血清的稀釋液，可以使染色計數(shù)更為準確。
2、材料：
0.4%w/v trypan blue；Erythosin bluish stain；取0.1gram Erythrosin bluish、0.05gram preservative methyl paraben溶于100mlCa++/Mg++freesaline；血球計數(shù)盤及蓋玻片(Hemocytometerandcoverslip);計數(shù)器(counter);低倍倒立顯微鏡;粒子計數(shù)器(Coultercounter,CoulterElectronics)。白細胞稀釋液(4%乙酸溶液)。
3、步驟：
(1)取50μl細胞懸浮液與50μl trypan blue(orErythrosinbluish)等體積混合均勻于1.5ml小離心管中。
(2)取少許混合液(約15μl)自血球計數(shù)盤chamber上方凹槽加入，蓋上蓋玻片，于100倍倒立顯微鏡下觀察，活細胞不染色，死細胞則為藍色(或紅色-Erythrosin bluish)。
(3)計數(shù)四個大方格之細胞總數(shù)，再除4，乘以稀釋倍數(shù)(至少乘以2，因與trypanblue等體積混合)，*后乘以104，即為每ml中細胞懸浮液之細胞數(shù)。若細胞位于線上，只計上線與右線之細胞(或計下線與左線之細胞)。
注：
4大格細胞總數(shù)×稀釋倍數(shù)×10 4/4=細胞數(shù)/ml 每一大格的體積=2.5px×2.5px×0.25px=10 -4ml
計數(shù)板計數(shù)時，*適濃度為5～10×10 5細胞/ml，此范圍外計數(shù)誤差偏大。高濃度細胞懸液，可取出部分作稀釋或連續(xù)稀釋后計數(shù)。
注意要點：
1、冷凍越慢越好，復蘇越快越好。
2、與液氮接觸的操作，注意戴保護眼鏡和手套。細胞復蘇時，水浴中搖動小瓶易爆炸。且DMSO為有毒致癌品，接觸時帶好手套。
3、凍存細胞數(shù)量要足夠，一般要達到5x10^6/ml。濃度視情況而定。
4、做好標記：培養(yǎng)瓶上應該用馬克筆做好標記，寫上細胞名稱、代數(shù)和凍存時間。
5、對剛復蘇的細胞動作要輕柔，避免細胞破裂。
6、DMSO對大多數(shù)細胞不敏感，所以解凍之后不需要除去DMSO，解凍后頻繁換液會慢慢除去DMSO。部分對DMSO敏感的細胞需要除去DMSO。
7、解凍后的細胞要用和以前一樣的培養(yǎng)液和血清，突然換不一樣的培養(yǎng)液和血清會造成細胞生長不良，甚至死亡。
原創(chuàng)作者：上海遠慕生物科技有限公司
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