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技術(shù)文獻

質(zhì)粒DNA的堿裂解法提取與純化 @遠慕實驗
閱讀次數(shù):601 發(fā)布時間:2020/4/14 11:42:05
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    細菌質(zhì)粒是一類雙鏈、閉環(huán)的DNA,大小范圍從1kb至200kb以上不等。各種質(zhì)粒都是存在于細胞質(zhì)中、獨立于細胞染色體之外的自主復制的遺傳成份,通常情況下可持續(xù)穩(wěn)定地處于染色體外的游離狀態(tài),但在一定條件下也會可逆地整合到寄主染色體上,隨著染色體的復制而復制,并通過細胞分裂傳遞到后代。

 

    質(zhì)粒已成為目前zui常用的基因克隆的載體分子,重要的條件是可獲得大量純化的質(zhì)粒DNA分子。目前已有許多方法可用于質(zhì)粒DNA的提取,本實驗采用堿裂解法提取質(zhì)粒DNA。

 

    堿裂解法是一種應用zui為廣泛的制備質(zhì)粒DNA的方法,其基本原理為:當菌體在NaOH和SDS溶液中裂解時,蛋白質(zhì)與DNA發(fā)生變性,當加入中和液后,質(zhì)粒DNA分子能夠迅速復性,呈溶解狀態(tài),離心時留在上清中;蛋白質(zhì)與染色體DNA不變性而呈絮狀,離心時可沉淀下來。

 

    純化質(zhì)粒DNA的方法通常是利用了質(zhì)粒DNA相對較小及共價閉環(huán)兩個性質(zhì)。例如,氯化銫-溴化乙錠梯度平衡離心、離子交換層析、凝膠過濾層析、聚乙二醇分級沉淀等方法,但這些方法相對昂貴或費時。對于小量制備的質(zhì)粒DNA,經(jīng)過苯酚、lv仿抽提,RNA酶消化和乙醇沉淀等簡單步驟去除殘余蛋白質(zhì)和RNA,所得純化的質(zhì)粒DNA已可滿足細菌轉(zhuǎn)化、DNA片段的分離和酶切、常規(guī)亞克隆及探針標記等要求,故在分子生物學實驗室中常用。

 

    一、試劑準備

 

    1. 溶液Ⅰ: 50mM葡萄糖,25mM Tris-HCl(pH 8.0),10mM EDTA(pH 8.0)。1M Tris-HCl(pH 8.0)12.5ml,0.5M EDTA(pH 8.0)10ml,葡萄糖4.730g,加ddH2O至500ml。在10 lbf/in2高壓滅菌15min ,貯存于4℃。

 

    2. 溶液Ⅱ:0.2N NaOH,1% SDS。2N NaOH 1ml,10%SDS 1ml,加ddH2O至10ml。使用前臨時配置。

 

    3. 溶液Ⅲ:醋酸鉀(KAc)緩沖液,pH 4.8。5M KAc 300ml,冰醋酸 57.5ml,加ddH2O至500ml。4℃保存?zhèn)溆谩?/span>

 

    4. TE:10mM Tris-HCl(pH 8.0),1mM EDTA(pH 8.0)。1M Tris-HCl(pH 8.0)1ml,0.5M EDTA(pH 8.0)0.2ml,加ddH2O至100ml。15 lbf/in2高壓濕熱滅菌20min,4℃保存?zhèn)溆谩?/span>

 

    5.苯酚/lv仿/異戊醇(25:24:1)

 

    6.乙醇(無水乙醇、70%乙醇)

 

    7. 5×TBE:Tris 堿54g,硼酸27.5g,EDTA-Na2·2H2O 4.65g,加ddH2O 至1000ml。15 lbf/in2高壓濕熱滅菌20min,4℃保存?zhèn)溆谩?/span>

 

    8.溴化乙錠(EB):10mg/ml

 

    9.RNase A(RNA酶A):不含DNA酶(DNase-free) RNase A的10mg/ml,TE配制,沸水加熱15min,分裝后貯存于-20℃。

 

    10. 6×loading buffer(上樣緩沖液):0.25%溴酚藍,0.25%二甲苯青FF,40%(W/V)蔗糖水溶液。

 

    11. 1% 瓊脂糖凝膠:稱取1g瓊脂糖于三角燒瓶中,加100ml 0.5×TBE,微波爐加熱至完全溶化,冷卻至60℃左右,加EB母液(10mg/ml)至終濃度0.5/ml(注意:EB為強誘變劑,操作時帶手套),輕輕搖勻。緩緩倒入架有梳子的電泳膠板中,勿使有氣泡,靜置冷卻30min以上,輕輕拔出梳子,放入電泳槽中(電泳緩沖液0.5×TBE),即可上樣。

 

    二、操作步驟

 

    1. 挑取LB固體培養(yǎng)基上生長的單菌落,接種于2.0ml LB(含相應抗生素)液體培養(yǎng)基中,37℃、250g振蕩培養(yǎng)過夜(約12-14hr)。

 

    2.取1.5ml培養(yǎng)物入微量離心管中,室溫離心8000g×1min,棄上清,將離心管倒置,使液體盡可能流盡。

 

    3.將細菌沉淀重懸于100預冷的溶液Ⅰ中,劇烈振蕩,使菌體分散混勻。

 

    4.加200新鮮配制的溶液Ⅱ,顛倒數(shù)次混勻(不要劇烈振蕩),并將離心管放置于冰上2-3min,使細胞膜裂解(溶液Ⅱ為裂解液,故離心管中菌液逐漸變清)。

 

    5.加入150預冷的溶液Ⅲ,將管溫和顛倒數(shù)次混勻,見白色絮狀沉淀,可在冰上放置3-5min。溶液Ⅲ為中和溶液,此時質(zhì)粒DNA復性,染色體和蛋白質(zhì)不可逆變性,形成不可溶復合物,同時K+使SDS-蛋白復合物沉淀。

 

    6.加入450的苯酚/lv仿/異戊醇,振蕩混勻,4℃離心12000g × 10min。

 

    7.小心移出上清于一新微量離心管中,加入2.5倍體積預冷的無水乙醇,混勻,室溫放置2-5min,4℃離心12000g×15min。

 

    8.1ml預冷的70%乙醇洗滌沉淀1-2次,4℃離心8000g×7min,棄上清,將沉淀在室溫下晾干。

 

    9.沉淀溶于20 TE(含RNase A 20/ml),37℃水浴30min以降解RNA分子,-20℃保存?zhèn)溆谩?/span>

 

    三、質(zhì)粒DNA的電泳檢測

 

    觀察瓊脂凝膠中DNA的zui簡單方法是利用熒光染料溴化乙錠進行染色。該物質(zhì)含有一個可以嵌入DNA的堆積堿基之間的一個平面基團,這個基團的固定位置及其與堿基的密切接近,導致染料與DNA結(jié)合并呈現(xiàn)熒光,其熒光產(chǎn)率比游離染料溶液有所增加。DNA吸收254nm處的紫外輻射并傳遞給染料,而被結(jié)合的染料本身則在302nm和366nm有光吸收。這兩種情況下,被吸收的能量可在可見光譜紅橙區(qū)的590nm處重新發(fā)射出來。因此,當凝膠中含有游離溴化乙錠時即可以檢測到少量的DNA。

 

    取制備的質(zhì)粒DNA 1-2,加適當loading buffer混勻上樣,采用 1-5V/cm的電壓,使DNA分子從負極向正極移動至合適位置,取出凝膠置紫外燈下檢測,攝片。

 

    四、注意事項

 

    本裂解法小量制備質(zhì)粒 DNA重復性好,一般無麻煩。若所提取質(zhì)粒 DNA不能被限制性內(nèi)切酶切割,可通過酚/lv仿再次抽提,以清除雜質(zhì)來解決問題。

 

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